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Schéma schématique détaillé de l'encapsidation virale. | SciDraw Gallery

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Schéma schématique détaillé de l'encapsidation virale.

Biomédical

Description du prompt

Schéma schématique détaillé de l'encapsidation virale.

Illustrations associées

Les patients atteints de paralysie des membres inférieurs suite à un accident vasculaire cérébral ischémique aigu (AVCI) présentent un risque significativement accru de thrombose veineuse profonde (TVP), pouvant potentiellement entraîner une embolie pulmonaire et une augmentation de la mortalité et du handicap. Cette revue synthétise systématiquement les données probantes de la dernière décennie concernant l'épidémiologie, la physiopathologie et la prévention de la TVP chez les patients atteints d'AVCI et de paralysie des membres inférieurs. La pathogenèse de la TVP dans cette population est multifactorielle, impliquant une stase veineuse due à l'immobilité, une hypercoagulabilité induite par l'AVC, un dysfonctionnement endothélial, une immunothrombose médiée par les pièges extracellulaires des neutrophiles et une dysrégulation autonome. Une prévention efficace nécessite une stratification individualisée des risques intégrant l'évaluation clinique, les biomarqueurs et l'imagerie. Les stratégies prophylactiques actuelles comprennent l'anticoagulation pharmacologique (principalement l'héparine de bas poids moléculaire), les interventions mécaniques (telles que la compression pneumatique intermittente) et la mobilisation et la réadaptation précoces.

Les patients atteints de paralysie des membres inférieurs su...

## Schémas de type BioRender (Transfert mitochondrial médié par la transplantation de cellules EC)

### Paramètres généraux

- Style : Niveau sous-revue Nature, lignes claires, couleurs vives, éléments minimalistes, mettant en évidence les voies centrales et les interactions cellulaires, pas d'arrière-plan redondant.
- Disposition : Progression en trois colonnes (Gauche : Transfert mitochondrial naturel ; Milieu : Transplantation mitochondriale artificielle ; Droite : Mitophagie PINK1-Parkin), colonnes reliées par des flèches, avec la conclusion principale en haut : "Le transfert mitochondrial favorise la transplantation de cellules EC en activant la mitophagie, sans intégration fonctionnelle."
- Schéma de couleurs : MSC (vert), EC (bleu), mitochondries (rouge), autophagosome (cyan), molécules de signalisation (orange), texte noir (molécules clés en gras), échelle uniforme.

### Colonne de gauche : Transfert mitochondrial naturel (Co-transplantation MSC-EC)

1. Cellules et microenvironnement : MSC (hCD90+) et EC (hCD31+) distribuées dans un rapport de 1:3, arrière-plan étiqueté "Stress ischémique" + "TNF-α" rouge, le bas représente "Hydrogel de collagène" (texture de grille).
2. Structure de transfert : MSC étend 3-4 "Nanotubes de tunneling/TNTs", tubes remplis de mitochondries rouges (flèche pointant vers EC), étiquetés "TNFAIP2 (régule la formation des TNTs)" "MIRO1 (régule la migration mitochondriale)".
3. Dynamique et effets : Étiquette "25% des EC acquièrent des mitochondries en 24h", chronologie (0h→7h→14h) étiquetée "Mitochondries présentes pendant 7h d'angiogenèse, disparaissent après 14h de stabilisation vasculaire, TNF-α peut relancer le transfert" ; petite image dans le coin supérieur droit compare "Groupe sans MSC" : Apoptose des EC (Annexin-V+), pas de vaisseaux sanguins.

### Colonne du milieu : Transplantation mitochondriale artificielle (Sans support MSC)

1. Processus et fonction : Le côté gauche représente "MSC→Mitochondries séparées→Transplantation vers EC (mitoAT-EC)", étiqueté "Rapport donneur:receveur 3:1" ; le côté droit EC étiqueté avec des indicateurs fonctionnels : "ATP↑2x" "OCR↑" "Taux d'apoptose induite par H₂O₂↓50%" "Taux de cicatrisation des rayures↑40%".
2. Effets in vivo : Modèle d'ischémie du membre postérieur de souris divisé en trois groupes—"Groupe sans cellules (nécrose tissulaire)" "Groupe EC non transplanté (flux sanguin↓60%)" "Groupe mitoAT-EC (vaisseaux sanguins humains UEA1+, flux sanguin↑80%)", avec une version simplifiée du diagramme de flux sanguin Doppler laser.
3. Caractéristiques mitochondriales : Étiquette "Dépolarisation (Surcharge de Ca²⁺)" (Détection JC-10 : vert↑ rouge↓), "Pas d'intégration d'ADNmt" (diagramme de séquençage : ADNmt du donneur indétectable à 7j).

### Colonne de droite : Mécanisme moléculaire central (Mitophagie)

1. Activation de l'autophagie : Agrandir mitoAT-EC local, mitochondries rouges enveloppées par "Autophagosome LC3B+" cyan, étiqueté "Mitochondries transplantées co-localisées avec les autophagosomes" ; "PINK1 (s'accumule dans les mitochondries dépolarisées)" rose → "Parkin (recruté vers les mitochondries)" jaune.
2. Comparaison du groupe d'inhibition : Petite icône "shPINK1-M"

## Schémas de type BioRender (Transfert mitochondrial médié ...

Structure et Fonction des Radeaux Lipidiques : Caractérisation Précise Basée sur la Composition Moléculaire et Schéma du Mécanisme de Régulation Multifonctionnel

I. Disposition Générale
Le schéma est divisé en sections supérieure et inférieure claires :

Partie supérieure (55 %) : "Composition Moléculaire et Caractéristiques Structurelles des Radeaux Lipidiques." Une "vue éclatée" est utilisée pour analyser un microdomaine de radeau lipidique.
Partie inférieure (45 %) : "Les Radeaux Lipidiques en tant que Plateformes de Régulation Multifonctionnelles." Quatre modules fonctionnels parallèles sont utilisés pour présenter leurs fonctions principales.

II. Étapes de Dessin Détaillées
Partie 1 : Composition Moléculaire et Caractéristiques Structurelles des Radeaux Lipidiques (Partie Supérieure du Schéma)

1. Positionnement Général et Schématique :
En haut au centre, dessiner une cellule simplifiée avec une région de radeau lipidique ovale mise en évidence sur sa membrane plasmique, étiquetée "Microdomaine de Radeau Lipidique".
Dessiner une flèche de décomposition éclatée à partir du radeau lipidique, pointant vers le schéma détaillé agrandi ci-dessous.
2. Schéma Détaillé de la Structure du Radeau Lipidique (Noyau) :
Environnement Lipidique : Dessiner une coupe transversale ovale du radeau lipidique, avec un fond gris clair pour représenter sa phase physique spéciale.
Lipide Central 1 : Cholestérol (30-50 %) :
Dessiner des points jaunes uniformes et denses dans toute la coupe transversale du radeau lipidique (valeur de couleur `#F1C40F`, strictement cohérente avec le schéma mitochondrial).
Note latérale : "Cholestérol (30-50 %)", avec une boîte explicative ajoutée : "Squelette structurel • L'anneau stérol rigide restreint le mouvement des lipides • Forme des liaisons hydrogène avec les sphingolipides." Une ligne pointillée peut être dessinée reliant un point jaune à un sphingolipide adjacent, avec la note latérale "Liaison H".
Lipide Central 2 : Sphingolipides (40-50 %) :
Dessiner de courtes barres rouges (sphingomyéline SM, `#E74C3C`) et de courtes barres bleues avec des chaînes de sucre ramifiées (glycosphingolipides GSL, tels que les gangliosides, `#3498DB`), étroitement intercalées avec le cholestérol.
Note latérale : "Sphingolipides (40-50 %)", avec deux sous-points : "Sphingomyéline (SM) : Les acides gras saturés à longue chaîne assurent un tassement hydrophobe serré", "Glycosphingolipides (GSL) : Les chaînes de sucre exposées fournissent des sites de liaison et une stabilité spatiale".
Composants Auxiliaires : Parsemé d'une petite quantité de courtes barres vert clair (phospholipides saturés, tels que le PC saturé, `#27AE60`), note latérale : "Phospholipides Saturés : Aident à l'emballage ordonné".
3. Représentation Précise des Protéines Caractéristiques :
Protéines Ancrées au GPI : Dessiner une protéine sphérique ancrée à la couche externe de la membrane via une chaîne glycosyl ondulée (violet). Étiqueter clairement "Protéine Ancrée au GPI" et "Interagit avec les GSL via les chaînes de sucre".
Protéines Modifiées par Palmitoylation : Dessiner une protéine transmembranaire ou associée à la membrane avec une chaîne d'acide palmitique (ligne ondulée orange) connectée à la partie s'étendant dans la membrane, insérée dans le noyau hydrophobe du radeau lipidique. Étiqueter "Protéine Modifiée par Palmitoylation (par exemple, la kinase Src)".
Récepteurs de Signalisation : Dessiner un récepteur transmembranaire typique (par exemple, le récepteur du facteur de croissance EGFR) avec son segment transmembranaire situé dans le radeau lipidique. Étiqueter

Structure et Fonction des Radeaux Lipidiques : Caractérisati...

APPROUVÉ

Ce document décrit la création d'une figure scientifique de type mécanisme qui résume le développement des exigences minimales pour les études de cytométrie en flux longitudinales. La figure doit employer un schéma propre, de style Nature/Cell, avec des icônes vectorielles, des flèches claires, des boucles de rétroaction et un minimum de texte, avec une mise en page allant de gauche à droite.

**TITRE :** Mécanisme pour le développement d'exigences minimales pour les études de cytométrie en flux longitudinales

**PANNEAU GAUCHE — SOURCES DE VARIABILITÉ EN ENTRÉE :**
Un groupe d'icônes représentant :
* Cytomètre de flux
* Flacons d'anticorps / réactifs
* Opérateurs / techniciens
* Emplacements d'instruments multi-sites
* Graphiques de données à paramètres élevés

Étiquettes :
* Dérive de l'instrument
* Variabilité de l'opérateur
* Différences de lots d'anticorps/réactifs
* Hétérogénéité multi-instruments / multi-sites
* Panneaux à haute dimensionnalité
* Pipelines d'analyse complexes

Des flèches provenant de toutes les sources convergent vers un nœud de problème central :
Étiquette du nœud : « Nécessité d'une orientation standardisée »

**PANNEAU CENTRAL — MÉCANISME DE CONSENSUS COMMUNAUTAIRE ITÉRATIF :**
Afficher une cascade séquentielle de quatre nœuds avec des flèches et une boucle de rétroaction :

APPROUVÉ Ce document décrit la création d'une figure scient...