Description du prompt
Titre : L'immunomodulation retardée inverse la connectivité fonctionnelle et les déficits moteurs à l'âge adulte après une hypoxie-ischémie (HI) néonatale. Auteurs : Sanjana Mandhan, Eric Chin, Anushka Acharya, Riddhi Patel, Fabiola Beatriz Santiago Maldonado, Diana Ortega, Hawley Helmbrecht, Shenandoah Robinson, Lauren Jantzie. Contexte : L'encéphalopathie hypoxique-ischémique (EHI) néonatale survient lorsque le cerveau du nouveau-né est privé d'oxygène et de flux sanguin au moment de la naissance. Elle reste une cause majeure de handicap neurologique et développemental à vie chez les nourrissons nés à terme. L'inflammation, le stress oxydatif et la mort cellulaire qui en résultent perturbent le développement normal du cerveau, entraînant des problèmes à long terme de mouvement, d'apprentissage et de cognition. Les traitements actuels, tels que l'hypothermie thérapeutique, n'offrent qu'une protection limitée et ne préviennent pas complètement ces handicaps fonctionnels. À cette fin, nous avons réutilisé un cocktail immunomodulateur contenant de la mélatonine pour tester l'hypothèse selon laquelle la perturbation neuronale fonctionnelle...
![Sujet : Schéma expérimental de l'activation bactérienne et du traitement par phage de la formation de biofilm
Style : Schéma expérimental scientifique concis, lignes noires sur fond blanc, icônes claires
Exigences :
Utiliser des flèches claires pour relier chaque étape.
Tous les noms clés doivent être représentés par des icônes/images, et s'assurer que les icônes sont faciles à comprendre.
La disposition du processus est de gauche à droite et de haut en bas, avec une logique claire.
Étapes et liste des icônes :
Début
[Icône : Tube de culture souche] (contenant la bactérie cible)
Utiliser [Icône : Anse d'inoculation] pour prélever une solution bactérienne du [Icône : Tube de culture souche].
Effectuer [Icône : Étaler en stries] sur [Icône : Boîte de Pétri de 90 mm] (contenant un milieu solide) pour activer les bactéries.
Incuber dans un incubateur jusqu'à ce que [Icône : Colonie isolée] se développe.
Utiliser [Icône : Anse d'inoculation] pour prélever une [Icône : Colonie isolée].
Inoculer la colonie prélevée dans [Icône : Erlenmeyer] contenant [Icône : Milieu liquide 2216E] et agiter la culture.
Mesurer périodiquement jusqu'à ce que [Icône : Spectrophotomètre] indique que la solution bactérienne [Icône : DO600=0.1].
Point de branchement : Répartir la solution bactérienne dans deux nouveaux [Icône : Erlenmeyer] stériles.
Groupe témoin : Conserver un [Icône : Erlenmeyer] tel quel.
Groupe expérimental : Ajouter [Icône : Bactériophage] à l'autre [Icône : Erlenmeyer].
Utiliser [Icône : Pipette] pour transférer le liquide des deux Erlenmeyer dans les puits de 4 [Icône : Plaques 24 puits] respectivement (le liquide de chaque Erlenmeyer correspond à 2 plaques de puits).
Traitement parallèle : Placer ces 4 [Icône : Plaques 24 puits] dans [Icône : Différents environnements] (par exemple, différentes températures ou agitateurs) et incuber pendant [Icône : 24 heures].
Après incubation, retirer toutes les plaques de puits.
Collecter le [Icône : Biofilm] formé dans chaque plaque de puits.
Placer les échantillons de [Icône : Biofilm] collectés dans [Icône : Tube à centrifuger de 1,5 ml].
Fin (pour une analyse ultérieure).
Disposition : Veuillez vous assurer que les étapes 1 à 7 sont disposées verticalement, et qu'après l'étape 8 (répartition), le groupe témoin et le groupe expérimental s'étendent vers le bas en parallèle, et que les étapes 9 à 13 convergent à nouveau.](/_next/image?url=https%3A%2F%2Fpub-8c0ddfa5c0454d40822bc9944fe6f303.r2.dev%2Fai-drawings%2FtBg6VEIvj0JHqBd0LOLXjlnAkPj8Lpax%2F06996af5-ce83-4761-bc4c-8fa3feecafab%2F4cedc944-94ba-4056-b4c9-a7ad54eefabf.png&w=3840&q=75)
