Description du prompt
Applications de l'intelligence artificielle en prosthodontie fixée sur dents naturelles : Une revue systématique Résumé Contexte : L'intelligence artificielle est de plus en plus intégrée dans la pratique dentaire, en particulier en prosthodontie fixée. Son application démontre un potentiel d'amélioration de la précision diagnostique, d'aide aux flux de travail cliniques et d'amélioration de la qualité des restaurations dentaires. Néanmoins, malgré son adoption croissante, des preuves solides et consolidées concernant son efficacité dans les procédures prothétiques essentielles restent limitées. Objectif : Évaluer en profondeur l'efficacité des systèmes basés sur l'intelligence artificielle en prosthodontie fixée sur dents naturelles, en mettant l'accent sur leurs applications dans la conception automatisée de couronnes, l'identification des marges et des lignes de finition, la détection des fissures et l'analyse de la perte de rétention dans les prothèses partielles fixes. Méthodes : Une recherche documentaire systématique a été menée dans plusieurs bases de données, notamment PubMed, Scopus, Google Scholar et Web of
![Sujet : Schéma expérimental de l'activation bactérienne et du traitement par phage de la formation de biofilm
Style : Schéma expérimental scientifique concis, lignes noires sur fond blanc, icônes claires
Exigences :
Utiliser des flèches claires pour relier chaque étape.
Tous les noms clés doivent être représentés par des icônes/images, et s'assurer que les icônes sont faciles à comprendre.
La disposition du processus est de gauche à droite et de haut en bas, avec une logique claire.
Étapes et liste des icônes :
Début
[Icône : Tube de culture souche] (contenant la bactérie cible)
Utiliser [Icône : Anse d'inoculation] pour prélever une solution bactérienne du [Icône : Tube de culture souche].
Effectuer [Icône : Étaler en stries] sur [Icône : Boîte de Pétri de 90 mm] (contenant un milieu solide) pour activer les bactéries.
Incuber dans un incubateur jusqu'à ce que [Icône : Colonie isolée] se développe.
Utiliser [Icône : Anse d'inoculation] pour prélever une [Icône : Colonie isolée].
Inoculer la colonie prélevée dans [Icône : Erlenmeyer] contenant [Icône : Milieu liquide 2216E] et agiter la culture.
Mesurer périodiquement jusqu'à ce que [Icône : Spectrophotomètre] indique que la solution bactérienne [Icône : DO600=0.1].
Point de branchement : Répartir la solution bactérienne dans deux nouveaux [Icône : Erlenmeyer] stériles.
Groupe témoin : Conserver un [Icône : Erlenmeyer] tel quel.
Groupe expérimental : Ajouter [Icône : Bactériophage] à l'autre [Icône : Erlenmeyer].
Utiliser [Icône : Pipette] pour transférer le liquide des deux Erlenmeyer dans les puits de 4 [Icône : Plaques 24 puits] respectivement (le liquide de chaque Erlenmeyer correspond à 2 plaques de puits).
Traitement parallèle : Placer ces 4 [Icône : Plaques 24 puits] dans [Icône : Différents environnements] (par exemple, différentes températures ou agitateurs) et incuber pendant [Icône : 24 heures].
Après incubation, retirer toutes les plaques de puits.
Collecter le [Icône : Biofilm] formé dans chaque plaque de puits.
Placer les échantillons de [Icône : Biofilm] collectés dans [Icône : Tube à centrifuger de 1,5 ml].
Fin (pour une analyse ultérieure).
Disposition : Veuillez vous assurer que les étapes 1 à 7 sont disposées verticalement, et qu'après l'étape 8 (répartition), le groupe témoin et le groupe expérimental s'étendent vers le bas en parallèle, et que les étapes 9 à 13 convergent à nouveau.](/_next/image?url=https%3A%2F%2Fpub-8c0ddfa5c0454d40822bc9944fe6f303.r2.dev%2Fai-drawings%2FtBg6VEIvj0JHqBd0LOLXjlnAkPj8Lpax%2F06996af5-ce83-4761-bc4c-8fa3feecafab%2F4cedc944-94ba-4056-b4c9-a7ad54eefabf.png&w=3840&q=75)
