Description du prompt
Schéma d'un bioprocédé en deux étapes pour une production améliorée d'hydrogène et d'acides gras volatils (AGV) à partir de déchets organiques. Le schéma présente un style scientifique épuré avec un fond blanc, un minimum de texte et des icônes vectorielles plates, illustrant un flux de gauche à droite. Étape 1 : Fermentation sombre assistée électriquement (DFMEC) Un seul réacteur anaérobie contenant une anode et une cathode connectées à une alimentation électrique, indiquant le flux d'électrons de l'anode à la cathode. Les entrées comprennent des déchets alimentaires riches en carbone et du lisier de porc riche en azote. Le réacteur contient un bouillon de fermentation mixte et un biochar redox-ingénierisé composé de marc de café usagé (SCG) enrobé d'un polymère redox-actif (PEDOT). Une vue agrandie met en évidence le biochar SCG–PEDOT redox-ingénierisé. Fonctions clés : * Navette d'électrons / Transfert direct d'électrons interespèces (DIET) * Contrôle du potentiel d'électrode régulant le rapport NADH/NAD+, où un rapport plus élevé améliore la production de H2 et un rapport plus faible améliore la production d'AGV. Sorties : * Gaz H2 (bulles quittant le réacteur) * Flux d'effluent étiqueté "riche en AGV (acétate)" Étape 2 : Cellule d'électrolyse microbienne (CEM) Une CEM à deux compartiments séparés par une membrane. La chambre anodique contient un biofilm oxydant l'acétate et des micro-organismes exoelectrogènes.
![Sujet : Schéma expérimental de l'activation bactérienne et du traitement par phage de la formation de biofilm
Style : Schéma expérimental scientifique concis, lignes noires sur fond blanc, icônes claires
Exigences :
Utiliser des flèches claires pour relier chaque étape.
Tous les noms clés doivent être représentés par des icônes/images, et s'assurer que les icônes sont faciles à comprendre.
La disposition du processus est de gauche à droite et de haut en bas, avec une logique claire.
Étapes et liste des icônes :
Début
[Icône : Tube de culture souche] (contenant la bactérie cible)
Utiliser [Icône : Anse d'inoculation] pour prélever une solution bactérienne du [Icône : Tube de culture souche].
Effectuer [Icône : Étaler en stries] sur [Icône : Boîte de Pétri de 90 mm] (contenant un milieu solide) pour activer les bactéries.
Incuber dans un incubateur jusqu'à ce que [Icône : Colonie isolée] se développe.
Utiliser [Icône : Anse d'inoculation] pour prélever une [Icône : Colonie isolée].
Inoculer la colonie prélevée dans [Icône : Erlenmeyer] contenant [Icône : Milieu liquide 2216E] et agiter la culture.
Mesurer périodiquement jusqu'à ce que [Icône : Spectrophotomètre] indique que la solution bactérienne [Icône : DO600=0.1].
Point de branchement : Répartir la solution bactérienne dans deux nouveaux [Icône : Erlenmeyer] stériles.
Groupe témoin : Conserver un [Icône : Erlenmeyer] tel quel.
Groupe expérimental : Ajouter [Icône : Bactériophage] à l'autre [Icône : Erlenmeyer].
Utiliser [Icône : Pipette] pour transférer le liquide des deux Erlenmeyer dans les puits de 4 [Icône : Plaques 24 puits] respectivement (le liquide de chaque Erlenmeyer correspond à 2 plaques de puits).
Traitement parallèle : Placer ces 4 [Icône : Plaques 24 puits] dans [Icône : Différents environnements] (par exemple, différentes températures ou agitateurs) et incuber pendant [Icône : 24 heures].
Après incubation, retirer toutes les plaques de puits.
Collecter le [Icône : Biofilm] formé dans chaque plaque de puits.
Placer les échantillons de [Icône : Biofilm] collectés dans [Icône : Tube à centrifuger de 1,5 ml].
Fin (pour une analyse ultérieure).
Disposition : Veuillez vous assurer que les étapes 1 à 7 sont disposées verticalement, et qu'après l'étape 8 (répartition), le groupe témoin et le groupe expérimental s'étendent vers le bas en parallèle, et que les étapes 9 à 13 convergent à nouveau.](/_next/image?url=https%3A%2F%2Fpub-8c0ddfa5c0454d40822bc9944fe6f303.r2.dev%2Fai-drawings%2FtBg6VEIvj0JHqBd0LOLXjlnAkPj8Lpax%2F06996af5-ce83-4761-bc4c-8fa3feecafab%2F4cedc944-94ba-4056-b4c9-a7ad54eefabf.png&w=3840&q=75)
