
Estilo: Esquema científico limpio con fondo blanco, texto mínimo e iconos vectoriales planos dispuestos horizontalmente. Flujo de izquierda a derecha, enfatizando un enfoque científico sin leyendas y texto conciso. Diseño: Dos paneles conectados: Etapa 1 (izquierda) que transiciona a la Etapa 2 (derecha). Etapa 1: Fermentación Oscura Asistida por Electroquímica (DFMEC). Un único reactor anaeróbico contiene un ánodo y un cátodo, conectados a una fuente de alimentación que ilustra el flujo de electrones desde el ánodo al cátodo. Entradas: Residuos de alimentos (ricos en C), estiércol de cerdo (rico en N), relación C/N optimizada y auto-amortiguación. Dentro del reactor: Caldo de fermentación mixto y biocarbón derivado de SCG recubierto con un polímero redox-activo. Etiqueta corta: "Zoom mostrando biocarbón SCG–PEDOT con ingeniería Redox." Funciones clave (iconos): Transporte de electrones / DIET. Control del potencial del electrodo → Regulación de NADH/NAD⁺, indicando que una proporción más alta mejora la producción de H₂, mientras que una proporción más baja mejora la producción de AGV. Salidas: Gas H₂ (burbujas saliendo del reactor). Flecha de efluente etiquetada: "Rico en AGV (acetato)". Etapa 2: Celda de Electrólisis Microbiana (MEC).
![Asunto: Diagrama de flujo experimental de activación bacteriana y tratamiento con fagos de la formación de biopelículas
Estilo: Diagrama de flujo experimental científico y conciso, líneas negras sobre fondo blanco, iconos claros
Requisitos:
Utilizar flechas claras para conectar cada paso.
Todos los sustantivos clave deben representarse con iconos/imágenes, y asegurar que los iconos sean fáciles de entender.
El diseño del proceso es de izquierda a derecha y de arriba a abajo, con una lógica clara.
Pasos y Lista de Iconos:
Inicio
[Icono: Tubo de reserva] (que contiene la bacteria objetivo)
Usar [Icono: Asa de inoculación] para recoger solución bacteriana del [Icono: Tubo de reserva].
Realizar [Icono: Siembra por estrías] en [Icono: Placa de Petri de 90 mm] (que contiene medio sólido) para activar las bacterias.
Incubar en una incubadora hasta que crezca [Icono: Colonia individual].
Usar [Icono: Asa de inoculación] para recoger una [Icono: Colonia individual].
Inocular la colonia recogida en [Icono: Matraz Erlenmeyer] que contiene [Icono: Medio líquido 2216E] y agitar el cultivo.
Medir periódicamente hasta que [Icono: Espectrofotómetro] muestre que la solución bacteriana tiene [Icono: OD600=0.1].
Punto de ramificación: Dispensar la solución bacteriana en dos nuevos [Icono: Matraces Erlenmeyer] estériles.
Grupo de control: Mantener un [Icono: Matraz Erlenmeyer] tal cual.
Grupo experimental: Añadir [Icono: Bacteriófago] al otro [Icono: Matraz Erlenmeyer].
Usar [Icono: Pipeta] para transferir el líquido de los dos matraces Erlenmeyer a los pocillos de 4 [Icono: Placas de 24 pocillos] respectivamente (el líquido de cada matraz Erlenmeyer corresponde a 2 placas de pocillos).
Procesamiento paralelo: Colocar estas 4 [Icono: Placas de 24 pocillos] en [Icono: Diferentes entornos] (por ejemplo, diferentes temperaturas o agitadores) e incubar durante [Icono: 24 horas].
Después de la incubación, retirar todas las placas de pocillos.
Recoger la [Icono: Biopelícula] formada en cada placa de pocillos.
Colocar las muestras de [Icono: Biopelícula] recogidas en [Icono: Tubo de centrífuga de 1.5 ml].
Fin (para análisis posteriores).
Diseño: Por favor, asegúrese de que los pasos 1-7 estén dispuestos verticalmente, y después del paso 8 (dispensación), el grupo de control y el grupo experimental se expandan hacia abajo en paralelo, y los pasos 9-13 converjan de nuevo.](/_next/image?url=https%3A%2F%2Fpub-8c0ddfa5c0454d40822bc9944fe6f303.r2.dev%2Fai-drawings%2FtBg6VEIvj0JHqBd0LOLXjlnAkPj8Lpax%2F06996af5-ce83-4761-bc4c-8fa3feecafab%2F4cedc944-94ba-4056-b4c9-a7ad54eefabf.png&w=3840&q=75)
Asunto: Diagrama de flujo experimental de activación bacteri...