Prompt-Beschreibung
Titel: Verzögerte Immunmodulation kehrt funktionelle Konnektivität und motorische Defizite im Erwachsenenalter nach neonataler Hypoxie-Ischämie (HI) um Autoren: Sanjana Mandhan, Eric Chin, Anushka Acharya, Riddhi Patel, Fabiola Beatriz Santiago Maldonado, Diana Ortega, Hawley Helmbrecht, Shenandoah Robinson, Lauren Jantzie. Hintergrund: Neonatale hypoxisch-ischämische Enzephalopathie (HIE) tritt auf, wenn das Gehirn des Neugeborenen um die Geburtszeit herum von Sauerstoff und Blutfluss abgeschnitten wird. Sie ist nach wie vor eine Hauptursache für lebenslange neurologische und entwicklungsbedingte Behinderungen bei reifen Säuglingen. Die daraus resultierende Entzündung, oxidativer Stress und Zelltod stören die normale Gehirnentwicklung und führen zu langfristigen Problemen in Bewegung, Lernen und Kognition. Aktuelle Behandlungen wie die therapeutische Hypothermie bieten nur begrenzten Schutz und verhindern diese funktionellen Beeinträchtigungen nicht vollständig. Zu diesem Zweck haben wir einen immunmodulatorischen Cocktail mit Melatonin umfunktioniert, um die Hypothese zu testen, dass gestörte funktionelle neuronale
![Betreff: Experiment-Flussdiagramm der Bakterienaktivierung und Phagenbehandlung von Biofilmbildung
Stil: Prägnantes, wissenschaftliches experimentelles Flussdiagramm, schwarze Linien auf weißem Hintergrund, klare Icons
Anforderungen:
Verwenden Sie klare Pfeile, um jeden Schritt zu verbinden.
Alle wichtigen Substantive müssen durch Icons/Bilder dargestellt werden, und stellen Sie sicher, dass die Icons leicht verständlich sind.
Das Prozesslayout ist von links nach rechts und von oben nach unten, mit klarer Logik.
Schritte und Icon-Liste:
Start
[Icon: Vorratsröhrchen] (enthält Zielbakterien)
Verwenden Sie [Icon: Impföse], um Bakterienlösung aus [Icon: Vorratsröhrchen] aufzunehmen.
Führen Sie [Icon: Strichausplattierung] auf [Icon: 90mm Petrischale] (enthält festes Medium) durch, um Bakterien zu aktivieren.
Inkubieren Sie in einem Inkubator, bis [Icon: Einzelkolonie] wächst.
Verwenden Sie [Icon: Impföse], um eine [Icon: Einzelkolonie] aufzunehmen.
Inokulieren Sie die aufgenommene Kolonie in [Icon: Erlenmeyerkolben] mit [Icon: 2216E Flüssigmedium] und schütteln Sie die Kultur.
Messen Sie periodisch, bis [Icon: Spektralphotometer] die Bakterienlösung [Icon: OD600=0.1] anzeigt.
Verzweigungspunkt: Verteilen Sie die Bakterienlösung in zwei neue, sterile [Icon: Erlenmeyerkolben].
Kontrollgruppe: Belassen Sie einen [Icon: Erlenmeyerkolben] wie er ist.
Experimentalgruppe: Geben Sie [Icon: Bakteriophage] in den anderen [Icon: Erlenmeyerkolben].
Verwenden Sie [Icon: Pipette], um die Flüssigkeit aus den beiden Erlenmeyerkolben in die Wells von 4 [Icon: 24-Well-Platten] zu übertragen (die Flüssigkeit aus jedem Erlenmeyerkolben entspricht 2 Well-Platten).
Parallele Verarbeitung: Platzieren Sie diese 4 [Icon: 24-Well-Platten] in [Icon: Verschiedenen Umgebungen] (z. B. unterschiedliche Temperaturen oder Schüttler) und inkubieren Sie sie für [Icon: 24 Stunden].
Entnehmen Sie nach der Inkubation alle Well-Platten.
Sammeln Sie den [Icon: Biofilm], der sich in jeder Well-Platte gebildet hat.
Platzieren Sie die gesammelten [Icon: Biofilm]-Proben in [Icon: 1,5ml Zentrifugenröhrchen].
Ende (für nachfolgende Analyse).
Layout: Bitte stellen Sie sicher, dass die Schritte 1-7 vertikal angeordnet sind und sich nach Schritt 8 (Verteilen) die Kontrollgruppe und die Experimentalgruppe parallel nach unten ausdehnen und die Schritte 9-13 wieder zusammenlaufen.](/_next/image?url=https%3A%2F%2Fpub-8c0ddfa5c0454d40822bc9944fe6f303.r2.dev%2Fai-drawings%2FtBg6VEIvj0JHqBd0LOLXjlnAkPj8Lpax%2F06996af5-ce83-4761-bc4c-8fa3feecafab%2F4cedc944-94ba-4056-b4c9-a7ad54eefabf.png&w=3840&q=75)
