Prompt-Beschreibung
Anwendungen künstlicher Intelligenz in der festsitzenden, zahngestützten Prothetik: Eine systematische Übersichtsarbeit Zusammenfassung Hintergrund: Künstliche Intelligenz wird zunehmend in die zahnärztliche Praxis integriert, insbesondere in die festsitzende Prothetik. Ihre Anwendung zeigt Potenzial zur Verbesserung der diagnostischen Präzision, zur Unterstützung klinischer Arbeitsabläufe und zur Steigerung der Qualität von Zahnersatz. Trotz ihrer zunehmenden Verbreitung sind jedoch robuste und konsolidierte Beweise für ihre Wirksamkeit bei wesentlichen prothetischen Verfahren weiterhin begrenzt. Zielsetzung: Die Wirksamkeit von Systemen auf Basis künstlicher Intelligenz in der zahngestützten, festsitzenden Prothetik umfassend zu bewerten, wobei der Schwerpunkt auf ihren Anwendungen in der automatisierten Kronenkonstruktion, der Identifizierung von Rändern und Präparationsgrenzen, der Risserkennung und der Analyse von Retentionsverlusten bei festsitzenden Brücken liegt. Methoden: Eine systematische Literaturrecherche wurde in verschiedenen Datenbanken durchgeführt, darunter PubMed, Scopus, Google Scholar und Web of
![Betreff: Experiment-Flussdiagramm der Bakterienaktivierung und Phagenbehandlung von Biofilmbildung
Stil: Prägnantes, wissenschaftliches experimentelles Flussdiagramm, schwarze Linien auf weißem Hintergrund, klare Icons
Anforderungen:
Verwenden Sie klare Pfeile, um jeden Schritt zu verbinden.
Alle wichtigen Substantive müssen durch Icons/Bilder dargestellt werden, und stellen Sie sicher, dass die Icons leicht verständlich sind.
Das Prozesslayout ist von links nach rechts und von oben nach unten, mit klarer Logik.
Schritte und Icon-Liste:
Start
[Icon: Vorratsröhrchen] (enthält Zielbakterien)
Verwenden Sie [Icon: Impföse], um Bakterienlösung aus [Icon: Vorratsröhrchen] aufzunehmen.
Führen Sie [Icon: Strichausplattierung] auf [Icon: 90mm Petrischale] (enthält festes Medium) durch, um Bakterien zu aktivieren.
Inkubieren Sie in einem Inkubator, bis [Icon: Einzelkolonie] wächst.
Verwenden Sie [Icon: Impföse], um eine [Icon: Einzelkolonie] aufzunehmen.
Inokulieren Sie die aufgenommene Kolonie in [Icon: Erlenmeyerkolben] mit [Icon: 2216E Flüssigmedium] und schütteln Sie die Kultur.
Messen Sie periodisch, bis [Icon: Spektralphotometer] die Bakterienlösung [Icon: OD600=0.1] anzeigt.
Verzweigungspunkt: Verteilen Sie die Bakterienlösung in zwei neue, sterile [Icon: Erlenmeyerkolben].
Kontrollgruppe: Belassen Sie einen [Icon: Erlenmeyerkolben] wie er ist.
Experimentalgruppe: Geben Sie [Icon: Bakteriophage] in den anderen [Icon: Erlenmeyerkolben].
Verwenden Sie [Icon: Pipette], um die Flüssigkeit aus den beiden Erlenmeyerkolben in die Wells von 4 [Icon: 24-Well-Platten] zu übertragen (die Flüssigkeit aus jedem Erlenmeyerkolben entspricht 2 Well-Platten).
Parallele Verarbeitung: Platzieren Sie diese 4 [Icon: 24-Well-Platten] in [Icon: Verschiedenen Umgebungen] (z. B. unterschiedliche Temperaturen oder Schüttler) und inkubieren Sie sie für [Icon: 24 Stunden].
Entnehmen Sie nach der Inkubation alle Well-Platten.
Sammeln Sie den [Icon: Biofilm], der sich in jeder Well-Platte gebildet hat.
Platzieren Sie die gesammelten [Icon: Biofilm]-Proben in [Icon: 1,5ml Zentrifugenröhrchen].
Ende (für nachfolgende Analyse).
Layout: Bitte stellen Sie sicher, dass die Schritte 1-7 vertikal angeordnet sind und sich nach Schritt 8 (Verteilen) die Kontrollgruppe und die Experimentalgruppe parallel nach unten ausdehnen und die Schritte 9-13 wieder zusammenlaufen.](/_next/image?url=https%3A%2F%2Fpub-8c0ddfa5c0454d40822bc9944fe6f303.r2.dev%2Fai-drawings%2FtBg6VEIvj0JHqBd0LOLXjlnAkPj8Lpax%2F06996af5-ce83-4761-bc4c-8fa3feecafab%2F4cedc944-94ba-4056-b4c9-a7ad54eefabf.png&w=3840&q=75)
